❶ 离子交换层析速问速答
离子交换层析是一种基于样品的带电性质进行分离的技术，主要用于蛋白纯化。以下为离子交换层析的问答，旨在深入理解该技术。
01、离子交换层析分为哪几种？
离子交换层析根据配基的不同，主要分为阳离子交换层析和阴离子交换层析。阳离子交换柱可以吸附带正电荷的蛋白，而阴离子交换柱则吸附带负电荷的蛋白。
02、如何选择阳离子还是阴离子？
蛋白是两性分子，具有等电点（PI）。当缓冲液的PH值低于蛋白的等电点（PI），蛋白带正电荷时，应选择阳离子交换柱；反之，当PH值高于等电点（PI），蛋白带负电荷时，选择阴离子交换柱。
03、强和弱离子交换剂的区别？
强离子交换剂在PH范围内载量恒定，弱离子交换剂载量随PH变化。优先使用强离子交换剂，若选择性不足，尝试使用弱离子交换剂。
04、如何选择缓冲液的PH值？
建议使用PH 6-8的中性缓冲液。通常，选择与等电点相差1个PH值的缓冲液作为初始尝试。为了达到最佳分离效果，通常需要进行PH条件的摸索。
05、若不知道蛋白的等电点？
大多数蛋白的等电点低于PH 7，可以使用Q柱进行尝试，缓冲液使用PH 7。也可以选择离子交换试剂盒进行摸索。
06、缓冲液的配置？
请参照说明书，注意在添加氯化钠后调整PH。
07、初次实验的标准条件？
开始使用缓冲液A：20-50 mM，洗脱缓冲液B：20-50 mM + 1M NaCl。
08、样品未结合？
可能原因包括：样品盐浓度太高、PH优化不足、缓冲液含有带电物质（如去垢剂）、柱效下降。解决方法包括CIP清洗。
09、结合后无法洗下？
尝试增加洗脱液盐浓度、评估蛋白稳定性、优化PH值。
10、纯度不足？
解决方法包括：采用线性梯度洗脱、优化缓冲液条件、使用更高分辨率产品、增加分子筛、疏水等多步纯化。
❷ 求问怎么用离子交换树脂层析分离混合氨基酸
离子交换树脂作为一种合成高聚物，不溶于水，能吸水膨胀。高聚物分子由能电离的极性基团及非极性的树脂组成。极性基团上的离子能与溶液中的离子起交换作用，而非极性的树脂本身物性不变。通常离子交换树脂根据所带基团可分为强酸（＝R＝SO3H）、弱（＝COOH）、强碱（＝N+＝R：）和弱碱（＝NH2＝NHR＝NR2）。离子交换树脂适用于分离小分子物质，如氨基酸、腺苷、腺苷酸等。然而，对于生物大分子如蛋白质，则不太适宜，因为它们不能扩散到树脂的链状结构中。因此，如果需要分离生物大分子，可以选择多糖聚合物如纤维素、葡聚糖为载体的离子交换剂。
本次实验利用磺酸阳离子交换树脂（Dowex 50）分离混合氨基酸，包括酸性氨基酸（天冬氨酸）、中性氨基酸（丙氨酸）和碱性氨基酸（赖氨酸）。在特定的pH条件下，这些氨基酸解离程度不同，通过调整脱液pH或离子强度可以实现分离。实验中所用到的材料包括层析柱、恒流泵、梯度混合器、试管及试管架、紫外分光光度计、2mol/L HCl、2mol/L NaOH、0.1mol/L HCl、0.1mol/L NaOH、pH4.2的柠檬酸缓冲液、pH5的醋酸缓冲液、0.2％中性茚三酮溶液以及氨基酸混合液。
树脂处理步骤为：首先将树脂置于100ml烧杯中，加入25ml 12mol/L HCl搅拌2小时，倾弃酸液后用蒸馏水洗涤至中性。随后，再加入25ml 12mol/L NaOH搅拌2小时，倾弃碱液后用蒸馏水洗涤至中性。最后，将树脂悬浮于50ml pH4.2柠檬酸缓冲液中备用。
装柱步骤包括：取直径0.8cm～1.2cm、长度10cm～12cm的层析柱，底部垫玻璃棉或海绵圆垫，自顶部注入经处理的树脂悬浮液。关闭层柱出口，待树脂沉降后，放出过量溶液，再加入一些树脂，使树脂沉积至8cm～10cm高度即可。于柱子顶部继续加入pH4.2柠檬酸缓冲液洗涤，确保流出液pH为4.2，关闭柱子出口，保持液面高出树脂表面1cm左右。
加样、洗脱及洗脱液收集步骤为：打开山口使缓冲液流出，待液面几乎平齐树脂表面时关闭出口。用长滴管将15滴氨基酸混合液直接加到树脂顶部，打开出口使其缓慢流入柱内。当液面刚平树脂表面时，加入0.1mol/L HCl 3ml，以10滴/分钟～12滴/分钟的流速洗脱，收集洗脱液，每管20滴，逐管收存。当HCl液面刚平树脂表面时，用1ml pH4.2柠檬酸缓冲液冲洗柱壁一次，接着用2ml pH4.2柠檬酸缓冲液洗脱，保持流速10滴/分钟～12滴/分钟并注意勿使树脂表面干燥。
在收集洗脱液的过程中，逐管用茚三酮检验氨基酸的洗脱情况，方法是：于各管洗脱液中加10滴pH5醋酸缓冲液和10滴中性茚三酮溶液，沸水浴中煮10分钟，如溶液呈紫蓝色，表示已有氨基酸洗脱下来。显色的深度可代表洗脱的氨基酸浓度，可比色测。在用pH4.2柠檬酸缓冲液把第二个氨基酸洗脱出来之后，再收集两管茚三酮反应阴性部分，关闭层析柱出口，将树脂顶部剩余的pH4.2柠檬酸缓冲液移去。于树脂顶部加入2ml 0.1mol/L NaOH，打开出口使其缓慢流入柱内，按上面步骤续用0.1mol/L NaOH洗脱并逐管收集，注意保持流速10滴/分钟～12滴/分钟，每管20滴。做洗脱液中氨基酸检验，在第三个氨基酸用0.1mol/L NaOH洗脱下来以后，再继续收集两管茚三酮反应阴性部分。
最后，以洗脱液管号为横坐标，洗脱液各管光密度（以水作空白，在570nm波长读取吸光度）或颜色深浅（以-，±，+，++．．．表示）为纵坐标作图，即可画出一条洗脱曲线。
实验注意事项包括：保持流速10滴/分钟～12滴/分钟，并注意勿使树脂表面干燥。在装柱时必须防止气泡、分层及柱子液面在树脂表面以下等现象发生。
❸ 离子交换层析基本信息
离子交换层析是一种利用物质的电荷特性进行分离和纯化的技术。其核心是基质，通常是带有电荷的树脂或纤维素。这些基质根据其电荷性质可分为两类：阴离子交换树脂，带有正电荷，和阳离子树脂，带有负电荷。
在蛋白质分离纯化过程中，离子交换层析的原理基于蛋白质的等电点特性。当蛋白质处于不同的pH环境中，其带电状态会发生变化。阴离子交换树脂会结合带有负电荷的蛋白质，使得这些蛋白质被吸附在柱子上。要将它们分离出来，可以通过逐步提高洗脱液中的盐浓度，结合较弱的蛋白质首先会脱落下来。
相反，阳离子交换树脂结合的是带有正电荷的蛋白质。这些蛋白质的洗脱则需要采用不同的策略，如增加洗脱液中的盐浓度或者提高其pH值，这样结合强度较弱的蛋白质会先被释放出来。通过这样的方法，离子交换层析能够有效地实现蛋白质的分离和纯化。
离子交换层析（Ion Exchange Chromatography简称为IEC）是以离子交换剂为固定相，依据流动相中的组分离子与交换剂上的平衡离子进行可逆交换时的结合力大小的差别而进行分离的一种层析方法。1