⑴ 超滤离心管如何选择以及使用方法
超滤离心管在蛋白质、DNA和生物分子的浓缩、纯化和脱盐过程中被广泛应用。选择和使用超滤离心管时，需要理解其与微滤的区别。
微滤（Microfiltration）利用微孔膜介质去除溶液中尺寸为0.1 μm至10.0 μm的颗粒或生物体，广泛应用于生物制药预过滤和除菌过滤。微滤在细胞实验中常用于样品和培养基灭菌，以及从细胞裂解物中去除完整细胞和碎片，确保下游应用结果准确性。
超滤（Ultrafiltration）通过压力或浓度梯度使料液通过半透膜进行分离，能截留尺寸范围为1-1000kDa的分子，并允许盐和水等小分子通过。它广泛应用于蛋白质溶液的分离和纯化，以及核酸样品制备，如分子克隆和质粒纯化。与沉淀法相比，超滤更为温和，避免生物大分子失活。
超滤离心管是一种利用离心力驱动溶液通过超滤膜进行快速浓缩、渗滤和缓冲液置换的装置，由盖子、过滤装置和离心管组成。通过选择适合的膜孔径，可进行除热源、澄清和分离大分子污染物，或浓缩和脱盐目标分子。
选择超滤离心管时，需考虑样品起始量及超滤膜的截留分子量（MWCO）。样品体积决定离心管尺寸，而截留分子量则需根据目标大分子的分子量选择，通常选择比目标分子小2-3倍的膜。
使用超滤离心管涉及准备、加样、离心和回收步骤。准备阶段需冲洗设备以消除甘油残留，然后在离心前加入适量纯水或缓冲溶液。离心前确保离心机转子平衡，以保持稳定。回收时，从过滤装置或离心管中轻轻提取样品，注意不要接触或损坏超滤膜。
遵循上述步骤，正确选择和使用超滤离心管，将有效实现蛋白质、DNA和生物分子的高效浓缩、纯化和脱盐，为科学研究和工业应用提供可靠支持。
⑵ 求助：第一次使用超滤离心管应该怎么处理
可能不同厂家的产品保存运输条件不一样。
如果有甘油等保护剂，那就一定要洗干净再加样品。版权
干的超滤管也要先润湿再用，否则可能不能完全利用膜面积。
最好，用样品buffer润洗下再加样，最大程度保证蛋白活性。尤其是用过后保存在NaOH或乙醇中后。
一般还是离心机甩一下好，使膜充分浸润。
降低吸附的办法有：
1，蛋白浓度不要过低
2，尽量选用纤维素的低吸附超滤管
3，用前可以用Tween 80等去垢剂润洗（不影响蛋白活性的前提下）
4，加入保护蛋白，如BSA(不影响蛋白后续使用的前提下)
用完保存在20% EtOH中，4C保存，防止长菌，依不同样品可以重复使用不同的次数。
⑶ 超滤管规格太小怎么放进离心机
1、首先将超滤内管插入所提供的一个微量离心管中。
2、其次向超滤管内管中加入不超过500微升的样本，并盖上盖子。
3、最后让盖子的连接带朝着转子的中央，用一个超滤管平衡即可。
⑷ 超滤离心管怎么使用
蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。也有其它型号的、不同体积大小和MWCO超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mg/ml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的Buffer，直到蛋白不发生沉淀为止。
5、前面几步用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。
6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作，用黄枪头（200ul）取，轻轻顺着边缘插入枪头，轻轻吹打、混匀蛋白液，注意不要碰到超滤膜，然后吸取浓缩液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取，否则难度太大，有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中，没过超滤膜，防止膜失水变干。
7、以下是处理超滤管，重复利用超滤管的步骤。
8、倒出超滤管里的水，用milliQ水轻轻润洗几次，【若管底有可见的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用枪头吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀悬起，然后倒掉，不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液，室温放置20min，期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液，将管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时，不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗，内壁再用MilliQ水洗干净。
9、取出浸没的管芯，加至接近满的MilliQ水，50ml管也加满MilliQ水，将管芯慢慢放入50ml
离心管，排出部分水，然后盖上盖子，放4度保存，直到下次使用。一般来说，按照上述步骤和注意事项，每根管用三四年不会坏。
⑸ 怎样提取那么小的病毒
提取小病毒的方法可以用超滤法：
1、超滤法的关键是超滤膜，可以简单理解为孔径极小的筛子。
2、当含有病毒的溶液通过超滤膜时，病毒就被留在了筛子上，而溶质和小分子物质如各种无机盐等就被滤过了，之后再拿一定体积的液体把病毒从筛子上溶解下来，就实现了浓缩。
要求获取的浓缩病毒大分子杂质含量很低时，就可以选择超离法超速离心了：
超速离心简单说，就是利用变态的重力把含病毒溶液里的病毒甩下来。
在病毒纯化时,常用的方法是密度梯度离心法：
1、首先，在离心管中按浓度低至高配置离心介质
2、然后放到变态离心机里高速甩俩小时候，要分离的样品里的物质就按密度排列在离心管里了。这时再按密度取出需要的条带并重新溶解就好了。