超滤膜截留分子量的选择

Ⅰ 超滤膜能除去硬水中的钙、镁离子吗

膜处理当中，一般可以分为超滤，纳滤和反渗透。您所指的超滤膜，一般孔径都在0.1-0.01um，截留的分子量做1000--30万之间。而钙镁离子的直径，分子量，都要远远小于该数值。因此为透过超滤膜，一般来说，超滤只能除去大蛋白，细菌等类似物质，如果您要去除钙镁离子，建议可以用纳滤或者反渗透。

去除水中钙镁离子的方法：1.反渗透。2.离子交换树脂法。

超滤能去除的：悬浮物、胶体、藻类、细菌、隐孢子虫、贾地鞭毛虫、病毒等

超滤不能去除的：水、可溶性盐、离子类、杀虫剂、溶解性有机物等

超滤膜的过滤精度是0.01微米，而钙离子直径为0.0004微米，镁离子直径为0.0005微米，超滤的孔径要远远大于钙镁离子的直径。如果您要去除钙镁离子，建议可以用纳滤或者反渗透。

Ⅱ 名词解释:超滤膜截留分子量

超滤膜，是一种孔径规格一致，额定孔径范围为0.001-0.02微米的微孔过滤膜。在膜专的一侧施以适当压力，就属能筛出小于孔径的溶质分子，以分离分子量大于500道尔顿(原子质量单位）、粒径大于10纳米的颗粒。

Ⅲ 截留分子量在1000-10万的溶质，请问该选怎样的超滤膜或怎样搭配膜主件。

要根据溶质的大小，比如多少纳米、多少道尔顿，然后选择膜。只知道分子量是不够的。例如蛋白质的分子量很大，但却只有几个纳米大小啊。

Ⅳ 超滤膜的截留分子量如何测定

一般用葡聚糖标定 ，用西格玛的标准分子量的葡聚糖

Ⅳ 超滤膜的去除大肠杆菌率是多少

大肠杆菌（Escherichia coli，E.coli） 革兰氏阴性短杆菌，大小0.5×1～3微米。超滤膜的截版留分子量为1000~500000道尔顿或者截权留溶质尺寸大小为0.005~0.1微米左右。因此，超滤膜几乎能截留溶液中所有的细菌、病毒及胶体微粒、蛋白质、大分子有机物。

Ⅵ 超滤截留的粒径范围

超滤膜一般从10-200nm孔隙不等，越小适合截留真溶液中的大分子量无机盐，越大适合截留水溶液和有机溶剂中的杂份固形物。超滤截留分子越小，压力越大。

Ⅶ 已有超滤膜PES，想知道它的截留分子量是多少，有没有一种方法测它的截留分子量，具体测试步骤是什么

1、两种测试方法，一种用纯水通量来测试，这种测试呢是经验值，但也不会错的离谱
另外一种是评价液来评价，可能要花钱。也可以两者结合来检测分子量。因为您只有膜。如果选择评价液，也不知道选择多少分子量的评价液合适。。。

2、建议方法，先用纯水通量对吗进行检测。。。纯水通量在 300L/㎡.H 大概是 10万分子量的
纯水通量在 120L/㎡.H 大概是 6000分子量的膜
如果要得到精准的分子量，根据您测的纯水通量。在用相对应的评价液，来进行过滤测试。。。
部知道您是否明白，也部知道是否能帮助到您，如果您还有不明白的可以在问我.有可能有很多错别字，请保函
QQ:350850315

Ⅷ 超滤膜上的截留率怎么选择

要求大于99%。高质量的超滤膜孔密度很大，截留率要求大于99%，孔径分布颤族很窄。纯水透过率越大越好。超滤膜，是耐世一种孔径规格一致，额定孔径范围为0.01微米以茄亩弊下的微孔过滤膜。性能用纯水透水率、截留分子量和截留百分率表示。

Ⅸ 蛋白分子量为45KD应选用截留分子量30kd的超滤管合适吗

3KD指的是截留分子量截留分子量（MWCO:molecularweightcutoff）是使用分子量大小表示的超滤膜的截留性能，专又称作切割分子量。由属于直接测定超滤膜的孔径相当困难，所以使用已知分子量的球状物质进行测定。如膜对被截留物质的截留率大于90%时，就用被截留物质的分子量表示膜的截留性能，称为膜的截留分子量。实际上，所使用的物质并非绝对的球形，由于试验条件的限制，所测定的截留率也有一定的误差，所以截留分子量不能绝对表示膜的分离性能。也就是说3KD分子量的产品有可能透过膜也有可能被膜拦截，一般来说希望3KD的产品全部透过，需要选择截留分子量更大的膜，比如5KD

Ⅹ 超滤离心管怎么使用

蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。也有其它型号的、不同体积大小和超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mg/ml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的Buffer，直到蛋白不发生沉淀为止。
5、前面几步用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，最后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。
6、取出最终蛋白浓缩液的操作在冰上操作，用黄枪头（200ul）取，轻轻顺着边缘插入枪头，轻轻吹打、混匀蛋白液，注意不要碰到超滤膜，然后吸取浓缩液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最后一点浓缩液不必吸取，否则难度太大，有可能损坏超滤膜。最后加入MilliQ水到超滤管中，没过超滤膜，防止膜失水变干。
7、以下是处理超滤管，重复利用超滤管的步骤。
8、倒出超滤管里的水，用milliQ水轻轻润洗几次，【若管底有可见的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用枪头吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀悬起，然后倒掉，不可用自来水猛冲】然后加入0.2M的NaOH溶液，室温放置20min，期间平衡超滤管。再离心10min。倒出残留的NaOH溶液，将管芯浸入MilliQ水的烧杯(1或2L)中,放置几个小时,再换新的水,放置几个小时，不断稀释NaOH浓度。50ml管和盖子用自来水洗，内壁再用MilliQ水洗干净。
9、取出浸没的管芯，加至接近满的MilliQ水，50ml管也加满MilliQ水，将管芯慢慢放入50ml
离心管，排出部分水，然后盖上盖子，放4度保存，直到下次使用。一般来说，按照上述步骤和注意事项，每根管用三四年不会坏。