乙醇和純化水的配製

Ⅰ 如何用無水乙醇配置70%的乙醇

首先要明白70%的醫用酒精用比例表示 ：70無水乙醇➕30純化水。

比如要配置100ML70%的醫用酒精先量取70ML無水乙醇，再加入30ML純化水便得，如果配置200ML，那麼70乙醇和30的水乘以2，依此類推，得出便是70%的醫用酒精。

無水乙醇很貴的，而且也不是完全無水，通常純度為99.9％。乙醇很難做到把水除去，市面上的乙醇一般是95%乙醇，做一般實驗和配製醫用酒精用95%乙醇就可以了。

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乙醇液體密度是0.789g/cm³，乙醇氣體密度為1.59kg/m³，相對密度（d15.56）0.816，式量（相對分子質量）為46.07g/mol。沸點是78.2℃，14℃閉口閃點，熔點是-114.3℃。純乙醇是無色透明的液體，有特殊香味，易揮發。

乙醇的物理性質主要與其低碳直鏈醇的性質有關。分子中的羥基可以形成氫鍵，因此乙醇黏性大，也不及相近相對分子質量的有機化合物極性大。

Ⅱ 1公斤95%乙醇液要兌多少純化水才能變成75%乙醇

1公斤*0.95/0.75=1.27公斤

Ⅲ 核酸純化試劑的使用方法和注意事項有哪些

使用方法因廠家不同而不同，下面是一氪生物技術的核酸純化試劑使用方法及注意事項，供參考：

步驟一：使用無水乙醇與純化水配製70%乙醇備用。
步驟二：從2-8℃冰箱中取出磁珠懸浮液，在室溫條件下震盪混勻，平衡30min。
步驟三：將充分震盪混勻平衡後的磁珠加入待純化酶反應或PCR反應產物溶液中。磁珠加入體積分別參考圖1和圖2，若待純化產物體積不足，可用純化水或10mM Tris-HCl（pH8.0）補充至相應體積。
步驟四：用移液器反復吹打10次，將磁珠懸浮液和PCR產物或者酶反應物充分混勻，室溫條件下靜置5min。
步驟五：將反應板放置在磁力架上，靜置2min，待溶液澄清後將上清吸走，轉入廢液桶內。
步驟六：向反應板中加入200μL新鮮配置的70%的乙醇，室溫靜置30s。靜置結束後將乙醇吸走，轉入廢液桶內。操作環節不可將反應板從磁力分離架上拿下或將磁珠吹散。
步驟七：重復步驟六。
步驟八：保持反應板置於磁力架上狀態，室溫開蓋晾乾2min以去除殘存的乙醇。
步驟九：將反應板從磁力架上取下來，加入50μL洗脫液，移液器反復吹打10次混勻，室溫靜置3min。洗脫液加入量根據實際需要而定，但應不少於5μL。
步驟十：將反應板重新放置在磁力架上，室溫靜置1min，上清液即純化後的DNA產物。
步驟十一：將上清液轉入新的反應管或者反應板中，供下一步反應或檢測使用。

Ⅳ 98%乙醇配製100ml消毒液需要多少純凈水

26.7。98%的乙醇原液一般是按照100毫升95%的酒精加26.7毫升純凈水或者蒸餾水，可以配成75%的殺菌消毒酒精。在對乙醇進行配比的一般不建議自行配比，相對比較麻煩、不容易控制，可以上葯房購買或者醫院購買75%的醫用酒精用於消毒。

Ⅳ 500毫升95℅乙醇加多少純化水可以變成75℅乙醇

利用公式計算比較復雜，對配比要求精度不高的可以這樣兌。95%和75%相差20%，95%酒精100ml加入20ml水就勾兌成120ml的75%的酒精了。可根據需要以此類推。