1、再生劑的質量
再生劑純度越高，樹脂的再生度越高，出水的離子泄露量越少，因此提高再生劑純度及運用軟化水溶液可提高再生度。
2、再生劑的用量
從理論分析，再生劑用量應與樹脂工作交換容量相當，但實際上由於交換反應是可逆的，再生劑用量需遠遠超過理論用量才能滿足足夠的再生度要求，再生劑的比耗增加，可以提高交換樹脂的再生程度，但當比耗增加到一定程度後，再繼續增加比例，再生程度提高很少，所以用過高的比耗是不經濟的，因此，實際操作過程中通常再生劑用量為理論用量的3-4倍，樹脂的工作交換容量可以恢復到原來的70%-80%。
3、再生劑的濃度
一般而言，再生劑的濃度越大，再生程度越高，但當再生劑的用量一定時，再生劑濃度增高，會使再生液的體積流量減少，與樹脂的接觸時間縮短而且可能產生不均勻的再生反應，再生效果下降，導致制水周期縮短，再生次數增加，酸鹼用量增大，所以生產上需要合理的控制再生劑的濃度。
4、再生劑的流速
再生劑的流速應控制適宜以保證再生反應充分，再生反應流速主要取決於離子的擴散速度，但同時與離子的價態有關，一般價態越高所需反應時間越長，再生劑流速過快，有利於離子的擴散，但卻減少再生劑與樹脂的接觸時間，再生效果反而可能降低，流速太小則不利於離子擴散，再生效果也會受到影響
5、再生液的溫度
提高再生液的溫度，能同時加快內擴散和外擴散，雖然對提高樹脂再生效果有利，同時提高溫度能大大改善對樹脂中的鐵、銅以及其氧化物和硅雜質的清除程度，但由於樹脂熱穩定性的限制，再生劑的溫度不宜過高，一般控制在25-40度為宜。
6、樹脂層的高度
全自動鈉離子交換器罐體樹脂層越低，因流速對其交換能力的影響就越大，當樹脂層高度達到30英尺（762mm）時，樹脂層高度造成的流速對其交換能力的影響可降到比較低的程度。因此一般建議樹脂層高度大於30英尺（762mm） 。
7、再生液的流量
通常再生液流量越小獲得的再生效果越好。但過低的再生液流量會使再生時間過長，易使再生劑繞過樹脂表面再生。因此一般要求再生液流量在0.25-0.9gpm/ft3(或順洗流量4-6m/h，逆流再生2-3m/h)。
8、再生液的濃度
根據離子平衡原理，再生液濃度提高，可以使樹脂的交換能力提高， 但再生劑用量一定的條件下，再生液濃度過高，會縮短再生液與樹脂的接觸時間，從而降低了再生效果.一般鹽液濃度控制在10%左右為宜。
9、水與樹脂的接觸時間
水與樹脂的接觸時間越長，交換越充分，但相對單位樹脂的產水能力下降，接觸的時間越短，交換越充分，單位樹脂的交換能力下降，而單位樹脂的產水能力提高。因此合理的接觸時間對於軟化器的經濟運行非常重要。一般建議1.0-5.0gpm/ft3樹脂或8-4bv/h。（每小時流量為樹脂裝載量的八至四十倍）。
『貳』 高效液相色譜與氣相色譜實驗條件主要優化哪些因素
高效液相色譜（HPLC）和氣相色譜（GC）是兩種常見的色譜技術，用於分離和分析混合物中的化合物。在這兩種技術中，實驗條件的優化是確保分離和檢測的准確性、靈敏度和重復性的關鍵。
高效液相色譜（HPLC）：
流動相的優化：
選擇合適的溶劑和溶劑混合比例，根據分析目標和樣品性質選擇最佳流動相。
調節流動相的極性和離子強度，以實現目標化合物的分離。
柱子選擇與優化：
根據目標分離化合物的性質（極性、分子量等）選擇合適的柱子類型（正相、反相、離子交換柱等）。
優化柱子的長度、直徑和填料粒徑，以實現最佳分離效果和解析度。
流速的優化：
調整流速以獲得最佳的分離效果和分析速度。
注意高流速可能導致峰變寬或解析度降低，低流速可能導致分離時間延長。
溫度控制：
控制溫度有助於穩定分離條件和改善分析結果的重現性。
檢測器的優化：
選擇合適的檢測器（UV-Vis、熒光、質譜等），並進行參數優化以獲得最佳靈敏度和選擇性。
樣品前處理：
樣品的前處理（如提取、稀釋、凈化）可以影響色譜分析的結果，因此需根據樣品特性進行適當的處理。
氣相色譜（GC）：
載氣選擇：
選擇合適的載氣（氫氣、氮氣、惰性氣體等），根據化合物的極性和分子量來決定。
考慮載氣流速和壓力對分離效果的影響。
柱子選擇與優化：
選擇柱子類型（毛細管柱、毛細管管柱等）和填料（聚合物、硅膠等）以實現化合物的最佳分離。
優化柱溫度和長度以提高分離效果。
溫度程序和溫度梯度：
優化溫度程序和梯度以控制化合物在柱子中的保留時間，並改善分離效果。
進樣量和進樣模式：
優化進樣量和進樣模式以避免柱子過載，並提高靈敏度和分離效果。
檢測器的優化：
根據需要選擇合適的檢測器（質譜、火焰離子檢測器等），並優化檢測器參數以獲得最佳靈敏度和分析結果。
樣品制備和前處理：
樣品制備和前處理步驟對GC分析結果至關重要，如樣品提取、衍生化等操作。
在兩種色譜技術中，優化這些因素能夠有效改善分離效果、提高靈敏度和准確性，並最終得到可靠的分析結果。根據具體分析要求和樣品特性，不斷調整和優化這些參數能夠幫助實現最佳的色譜分析條件。
『叄』 粗多糖的提取中，用了6次的EDAE凝膠層析柱流速過慢，怎樣去活化
EDAE是哪種凝膠柱？
是不是弱陰離子交換柱DEAE？
如果是DEAE的話給你一點清洗的參考
一，在位清洗
1， 用2M的NaCl至少清洗2個柱體積。
2， 用1M的NaOH 至少清洗4個柱體積。
3， 用2M的NaCl至少清洗2個柱體積。
4， 用至少2個柱體積的蒸餾水潤洗層析柱。
二，去除沉澱的蛋白質：
1， 注入一個柱體積的胃蛋白酶（1mg/ml in 0.5M NaCl,0.1M acetic acid）。室溫過夜或37°作用1小時。
2， 用至少2個柱體積的蒸餾水潤洗層析柱。
3， 用至少4個柱體積的儲存緩沖液沖洗。
也可以選用如下操作
1， 用6M鹽酸胍沖洗2個柱體積。
2， 立即用pH7-8的緩沖液沖洗至少5個柱體積。
3， 用至少2個柱體積的蒸餾水潤洗分離柱。
4， 用至少4個柱體積的儲存緩沖液沖洗。
三，去除脂類，疏水結合蛋白質或脂蛋白：
1， 如需徹底除去此類污染物，可使用有機溶劑或去污劑。
2， 在使用有機溶劑前，用蒸餾水沖洗填料至少4個柱體積以避免鹽類沉澱於層析柱中。
3， 在使用有機溶劑或溶液時，需要減小流速以避免分離柱超壓。
4， 清洗溶液最大濃度如下，100%的異丙醇，100%的甲醇，100%的乙腈，2M的氫氧化鈉，75%的乙酸，100%的乙醇，離子性或非離子型去污劑。
5， 避免使用陰離子去污劑。