❶ 超濾管濃縮液在上面還是下面
在上面。根據查詢超濾管的相關信息得知超濾管濃縮液在上面。超濾管具有快速超濾功能，能夠達到較高的濃縮倍數，輕松實現從稀釋和復雜的混和樣本中濃縮回收目的產物。
❷ 超濾管離心後為什麼還剩餘液體
題主是否想詢問「超濾管的使用方法」？
1、選擇合適的超濾管，主要考慮蛋白分子量和濃縮體積。
2、新超濾管使用前加入純水，水量完全過膜，冰浴或者冰箱里。
3、使用過的超濾管先倒出內涵乙醇，然後用純凈水沖洗干凈，
4、質量和重心都達到平衡。
❸ 超濾濃縮最低濃度
超濾濃縮最低濃度是2毫克每毫升。因為濃縮過快或者過度濃縮會引起蛋白沉澱。蛋白濃縮後最終濃度不超過2毫克每毫升，降低離心速度並改用截留分子量更大的超濾管。
❹ 蛋白用超濾管濃縮容易沉澱怎麼辦
可能是抄這個蛋白的水溶性較差，也就是只能保持在一定濃度不能太高
另外就和這個蛋白的穩定性有關了，超濾時保持低溫，體積縮小一點後就把濾液混勻避免局部濃度過高，選擇更合適的緩沖液，添加一點甘油等小分子物質等都可以增加蛋白的穩定性。
❺ 30kd超濾管最大轉速多少
30kd超濾管最大轉速4000rpm。最大不能超過4000g，離心5-8分鍾，即可將4ml樣品濃縮至1ml以下至幾十微升。一般是用來分離血漿。血漿蛋白的分離將血清加入到30kd分子量的超濾管中，將超濾管嵌套進入嵌套管中，進行高速離心，轉速12000轉每分鍾，離心10分鍾。離心結束後，將嵌套管中的液體收集，得到初步的組織液。
❻ 超濾濃縮離心管使用前要怎麼處理
可能不同廠家的產品保存運輸條件不一樣。
如果有甘油等保護劑，那就一定要洗干凈再加樣品。
乾的超濾管也要先潤濕再用，否則可能不能完全利用膜面積。
最好，用樣品buffer潤洗下再加樣，最大程度保證蛋白活性。尤其是用過後保存在NaOH或乙醇中後。
一般還是離心機甩一下好，使膜充分浸潤。
降低吸附的辦法有：
1，蛋白濃度不要過低
2，盡量選用纖維素的低吸附超濾管
3，用前可以用Tween
80等去垢劑潤洗（不影響蛋白活性的前提下）
4，加入保護蛋白，如BSA(不影響蛋白後續使用的前提下)
用完保存在20%
EtOH中，4C保存，防止長菌，依不同樣品可以重復使用不同的次數。
❼ 超濾濃縮離心速度多少
5000r/min左右。超濾管的離心轉速根據不同體積，不同膜孔徑有些許差異，一般在5000r/min左右。
❽ 超濾管分子量怎麼算
1/3。超濾管為了得到高收率，所選濾膜的截留分子量MWCO選擇所需截留分子大小的1/3，不超過目標分子量的一半。因此超濾管分子量所需截留分子大小的1/3這樣來計算。超濾離心管常用於悶鄭做細胞培養上清的蛋白濃縮的實驗，它會有內管和外管的兩個部拍罩或分，內管中是帶有一定分子量的膜，當高速離心時，分子量襲伍比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了，分子量比它大的就截留在上面（即內管中），這就是超濾的原理。